Page 163 - 外科护理学改革与创新研究

第四章 人类疾病动物模型研究与利用

3. 小动物实验模型代表
啮齿类小动物如大鼠和小鼠相对实验成本低，操作方便，且其都有左右心房
和心室组成，和人类相似。不同的是大鼠心率为 260~450 次 /min，小鼠心率为

500~600 次 /min。因大鼠基础心率快，相对不应期短，具有自动复律及除颤功能，
故诱导室颤时需要持续低强度电流维持，所需致颤时间较长。大鼠神经系统相对
不发达，心肺复苏后很少出现意识障碍及脑干功能衰竭，与人脑对缺血缺氧损伤
异常敏感的生理病理特点不同，在模拟严重缺氧性脑病时与临床情况有一定差别。

国内研究一般选用健康成年雄性 SD 大鼠（466±45g）进行 CA 后相关实验研究，
也有学者选用 10 周龄 Sprague-D awley 大鼠（310~320g）进行 CA 后观察到低温
（32℃）治疗可减轻神经损伤。还有选用昆明小鼠（30~40g）研究发现戊巴比妥
较水合氯醛更适合 CA 动物麻醉。

（二）常用诱导心搏骤停的实验方法
诱导心搏骤停常用的方法有电击致颤法、窒息法和氯化钾停跳法。2017 年
发表在 Resuscitation 上的综述总结了 2011—2016 年 CA 的动物模型文章，其中
电击致颤占 54%、窒息占 25%、高钾占 8%、冠状动脉结扎诱导急性心肌梗死占

2%、毒物占 3%、大血管闭塞占 1%、张力性气胸，还有几种方法的组合等。其中，
电击致颤模型中猪使用最广泛，窒息模型中多使用大鼠，高钾模型中多使用小鼠。
1. 电击致颤法诱导 CA
经右心导管交流电诱发室颤，这是最经典的电击方式，致颤的结果是心脏

无法维持正向血流。以大鼠为例：对致颤大鼠的一侧颈外静脉置入绝缘导管约
4cm，导管中插入导丝，剑突下皮下组织处置一侧电极，根据血压波形，判断导
丝是否进入右心室，2.5mA 通电诱颤，观察大鼠血压及心电图变化，调整诱颤导
丝位置，直至心电图呈室颤心律。致颤 2.5~3min 后关闭电源，见自发室颤。大

动物中以猪为例：给猪行右侧股静脉置管至右心室，胸壁皮下组织插入另一电极，
采用 30~60mA 交流电通电 10s 诱发室颤。经胸壁体外电击诱导室颤：经胸壁以
60~70V 直流电电击 5s 或 50~110V 交流电电击 1~2s，可重复电击多次，直至心
电图出现室颤。经食道 - 胸壁电刺激诱导室颤：经食道插入食道调搏电极至心脏

水平，同时将另一电极插入动物胸壁皮下。多项研究表明：6mA、4ms、50Hz 可
以达到最小损伤且稳定致颤的目的。开胸直视电击诱导室颤：将麻醉后家兔开胸
直视下采用 1V 交流电诱发室颤 4min，并在直视下行心脏按压及药物复苏治疗。

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